多克隆抗體的純化方法主要依據(jù)抗體的理化性質(zhì)（電荷、分子量、特異性結合能力）設計，常用的有粗純化方法（鹽析法）和精細純化方法（親和層析、離子交換層析等），具體如下：

1. 鹽析法（硫酸銨沉淀法）—— 粗純化

原理：中性鹽（常用硫酸銨）會破壞蛋白質(zhì)的水化膜，并中和其表面電荷，使抗體（主要是 IgG）因溶解度降低而沉淀析出；IgG 在硫酸銨飽和度 33%~50% 時可高效沉淀，而血清白蛋白等雜蛋白需更高飽和度才會沉淀，借此實現(xiàn)初步分離。

操作要點：

向血清中緩慢加入飽和硫酸銨溶液，邊加邊攪拌，使最終飽和度達到 40%~50%；

4℃靜置 1~2 小時，3000rpm 離心 15 分鐘收集沉淀；

用 PBS（磷酸緩沖鹽溶液）溶解沉淀，再通過透析或脫鹽柱去除鹽離子，得到粗提抗體。

優(yōu)缺點：

? 優(yōu)點：操作簡單、成本極低、能大程度保留抗體活性，適合大規(guī)模粗純化；

? 缺點：純度低（含白蛋白、雜免疫球蛋白等），僅作為后續(xù)精細純化的前處理。

2. 親和層析法 —— 高特異性純化

這是常用的精細純化方法，利用抗體的特異性結合特性分離，分為兩種類型：

（1）抗原親和層析

原理：基于抗原 - 抗體的特異性免疫結合（鎖鑰匹配），將純品抗原偶聯(lián)到層析介質(zhì)（如瓊脂糖凝膠）上，血清過柱時，只有目標抗體能與柱上抗原結合，雜蛋白直接流出；再用洗脫液（低 pH 緩沖液、高鹽溶液或抗原競爭液）將抗體洗脫下來。

操作要點：

抗原需高度純化（純度＞95%），否則會引入雜蛋白；

洗脫時用 pH 2.5~3.0 的甘氨酸緩沖液（溫和洗脫），洗脫后立即用 Tris 緩沖液中和 pH，防止抗體變性。

優(yōu)缺點：

? 優(yōu)點：純度高（特異性強），可直接獲得針對目標抗原的抗體；

? 缺點：抗原制備成本高，僅適用于單一抗原的抗體純化，通用性差。

（2）Protein A/G 層析

原理：Protein A（金黃色葡萄球菌來源）、Protein G（鏈球菌來源）能特異性結合 IgG 的 Fc 段（抗體恒定區(qū)），且不同物種 IgG 的結合效率不同（Protein A 優(yōu)先結合兔、人 IgG；Protein G 結合小鼠、山羊 IgG 范圍更廣）。

操作要點：

將 Protein A/G 偶聯(lián)到層析柱，血清過柱后 IgG 吸附在柱上；

用 pH 2.7~3.0 的洗脫液洗脫，中和后收集抗體。

優(yōu)缺點：

? 優(yōu)點：通用性強（無需制備抗原）、操作簡便、純度可達 90% 以上；

? 缺點：僅對 IgG 類抗體有效（IgM、IgA 不結合），不同物種抗體回收率差異大。

3. 離子交換層析 —— 精細純化（去除雜蛋白）

原理：利用抗體與雜蛋白的電荷差異分離（抗體的等電點約為 5.8~7.3）：當溶液 pH 高于抗體等電點時，抗體帶負電，可結合陰離子交換樹脂（如 DEAE - 纖維素）；pH 低于等電點時帶正電，結合陽離子交換樹脂（如 CM - 纖維素）。通過梯度鹽溶液洗脫，電荷差異大的雜蛋白先被洗脫，抗體后洗脫。

操作要點：

鹽析或親和層析后的抗體樣品需透析至低離子強度緩沖液，再上柱；

用 0~1mol/L 的 NaCl 梯度洗脫，收集含抗體的洗脫峰。

優(yōu)缺點：

? 優(yōu)點：可去除殘留雜蛋白（如白蛋白、降解片段），進一步提升純度；

? 缺點：需優(yōu)化緩沖液 pH 和離子強度，操作較繁瑣，分辨率受樣品復雜度影響。

4. 疏水作用層析 —— 輔助純化

原理：蛋白質(zhì)表面存在疏水基團，高鹽條件下疏水作用增強，抗體可結合疏水層析介質(zhì)（如苯基瓊脂糖）；降低鹽濃度時，疏水作用減弱，抗體逐步洗脫，雜蛋白（疏水性不同）則在不同鹽濃度下分離。

操作要點：鹽析后的樣品可直接上柱（高鹽環(huán)境），用低鹽梯度洗脫，收集抗體峰。

優(yōu)缺點：

? 優(yōu)點：能去除疏水性雜蛋白，與離子交換層析互補；

? 缺點：需優(yōu)化鹽濃度，部分抗體可能因疏水結合導致活性損失。